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May 11, 2023

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Rapports scientifiques volume 13,

Rapports scientifiques volume 13, Numéro d'article : 7665 (2023) Citer cet article

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Cette étude a été réalisée pour répondre à deux objectifs. Le premier objectif était d'isoler l'extrait de graines de Gundelia tournefortii L. à deux stades phénologiques de la production de graines (le début et la fin de la production de graines) ; la seconde était d'identifier les composés d'acides gras des graines de G. tournefortii L. dans ses principaux habitats situés dans la région centrale du Zagros, en Iran. Parmi eux, certains des principaux facteurs environnementaux au stade de la croissance reproductive, à savoir la physiographie, le sol et le climat, ont été étudiés. L'extraction a été réalisée à l'aide de l'appareil Soxhlet et les composés d'acides gras ont été identifiés par l'analyse GC-FID. En conséquence, le site n ° 5 avec les valeurs de 6, 06 et 7, 21 g avait la plus grande quantité d'extrait produit, tandis que les sites n ° 7 et 8 en avaient le moins qui était de 2, 86 et 3, 84 g à deux stades phénologiques de la production de graines. Il y avait une forte corrélation entre les principales variables environnementales et la quantité d'extrait produit dans les stades phénologiques de la production de graines ; cela a également été confirmé en ce qui concerne les composés d'acides gras et certaines de leurs caractéristiques. Globalement, l'efficacité des facteurs environnementaux sur le processus de synthèse des métabolites secondaires est indéniable.

À la fin du XIXe siècle, en raison des progrès croissants de différentes sciences, en particulier la chimie, couplée à son vaste domaine et à la pharmacie, la première extraction de matières chimiques pures à usage médical a été introduite, ce qui a conduit au traitement de patients, miraculeusement1. Par la suite, la tendance à la consommation de plantes médicinales a considérablement augmenté au cours des dernières décennies, de sorte que le XXIe siècle pourrait être nommé l'ère de l'étude et de la consommation des plantes médicinales2.

Les métabolites secondaires des plantes médicinales sont traités sous réserve du contrôle initial des processus génétiques, tandis que la production des composés mentionnés est affectée par des facteurs environnementaux. On pense que les métabolites secondaires sont produits pour réguler les adaptations des plantes contre les facteurs défavorables et les stress environnementaux, et sont extraits pour la défense chimique afin de maintenir l'équilibre et de poursuivre les activités vitales de la plante3.

Les graisses et tous les types d'origine végétale et animale sont les composants les plus importants des sources de nutriments4. Les acides gras sont constitués de : (1) liaisons simples saturées, (2) liaisons insaturées et (3) liaisons multiples insaturées. Les acides gras sont classés en fonction de la longueur de la chaîne, du nombre de doubles liaisons ou de son degré d'insaturation dans la chaîne5. Parmi ceux-ci, les compositions d'acides gras oméga-3, oméga-6 et oméga-9 appartiennent aux deux grandes classes de composés cités, à savoir les acides gras polyinsaturés (PUFA) et les acides gras monoinsaturés (MUFA)6. Le corps humain a besoin de ces acides gras essentiels (AGE) pour ses processus biologiques. Les acides gras oméga-3 sont bénéfiques pour les activités cardiaques, cérébrales et métaboliques. Les acides gras oméga-6 sont une importante source d'énergie pour le corps humain et les acides gras oméga-9 doivent exister dans une moindre mesure car ils sont produits par le corps humain pour favoriser la santé métabolique7.

La plupart des biochimistes et écologistes ont élargi leurs recherches dans le domaine de l'identification et de l'analyse des différents facteurs écologiques en association avec la quantité et la qualité des métabolites secondaires et des composés bioactifs naturels8. Les facteurs écologiques pourraient affecter les enzymes propriétaires liées à la voie de synthèse biochimique des métabolites secondaires et réduire la stabilité de la contribution9. Dans ce contexte, les facteurs écologiques les plus importants sur la quantité et la qualité des métabolites secondaires et des composés bioactifs naturels sont classés comme climatiques, édaphiques et physiographiques. Chacun de ces facteurs est composé de différents composants, créant différents gradients environnementaux dans l'étude écologique des sites concernés10. Les facteurs génétiques et héréditaires comme la diversité des espèces inter- et intra-plantes, la variété parmi les cultivars, les différents génotypes, et l'adoption des méthodes et techniques d'amélioration des cultures et des races contribuent fortement au taux de production de métabolites secondaires11. L'intégration des facteurs génétiques et environnementaux dans les études écologiques peut fournir des résultats favorables pour réaliser une analyse complète de la quantité et de la qualité des métabolites secondaires et des composés bioactifs naturels12.

L'Iran, en raison de sa situation dans une région géographique particulière, est soumis à l'émergence de différents climats et conditions édaphiques avec une place unique dans la géographie végétale en termes de diversité végétale au niveau mondial. L'Iran est l'une des 10 plantes les plus importantes à origine spécifique. De plus, il existe un domaine de culture de diverses plantes avec différentes caractéristiques écologiques comme les plantes comestibles, médicinales et industrielles en Iran avec une histoire enregistrée de milliers d'années13.

Les Asteraceae sont la plus grande famille de plantes à fleurs avec environ 900 genres et plus de 13 000 espèces. Le genre Gundelia, issu des Asteraceae, ne compte qu'une seule espèce en Iran, nommée Gundelia tournefortii L14. Le genre Gundelia est une plante vivace, vigoureuse et succulente avec des feuilles alternes et des divisions pennées par des côtés dentelés qui se transforment en épines. Les feuilles supérieures entourent et recouvrent les tiges des chapiteaux, qui portent des fleurs tubulaires monoïques, placées les unes à côté des autres sous la forme d'une collection sphérique. Chaque capitole possède une bractée majeure avec un collet constitué de nombreuses rangées de folioles reliées, qui créent une cuvette conique inversée aux bords épineux. Le réceptacle est recouvert d'une paille en forme d'écaille connectée formant des cellules, des cavités et des chambres par les bractées du collier, où une fleur est placée à l'intérieur. Les fleurs viennent en vert, jaune, blanc, rose et violet. Les chapiteaux finissent par devenir boisés et indéhiscents14. Cette plante pousse dans les régions montagneuses, tropicales ou tempérées. La distribution la plus élevée de cette plante à l'échelle mondiale est signalée dans les pays du pourtour méditerranéen, les pays africains, le Moyen-Orient, l'Afghanistan, le Turkménistan et au-delà du Caucase14. Il est souligné qu'il n'y a aucune preuve de consommation des métabolites secondaires de G. tournefortii L. pour fabriquer une drogue à base de plantes formulée enregistrée dans la pharmacopée iranienne. Il est également souligné qu'aucune licence n'a été délivrée par le ministère iranien de la santé, de la médecine et de l'éducation médicale concernant les médicaments ou la drogue à base de plantes synthétisée obtenue à partir des métabolites secondaires de G. tournefortii L. à usage général.

L'objectif de cette étude est d'identifier les profils d'acides gras des graines de G. tournefortii L. et leurs caractéristiques à travers l'appareil soxhlet et de les évaluer par GC/FID. L'évaluation et les analyses permettraient de comprendre certaines des variables écologiques les plus importantes (climat, sol et physiographie) sur le volume d'extrait produit à travers l'APC et l'analyse des grappes parmi les principaux habitats de G. tournefortti L. situés dans 11 régions majeures. habitats de la région centrale du Zagros en Iran. Les composés d'acides gras identifiés des graines de G. tournefortii L. et leurs caractéristiques ont été évalués et analysés par les techniques susmentionnées.

En général, l'extraction de l'huile de graines de G. tournefortii L. se déroule en deux étapes phonologiques différentes de la croissance reproductive, à savoir le début de la production de graines et la fin de la production de graines pour les habitats en question. Les couleurs de l'extrait huileux dans chaque habitat varient dans le spectre jaune. Les résultats indiquent que le rendement en volume d'extrait dans ces deux stades phénologiques mentionnés est différent dans leur sens quantitatif, ce qui ne vaut pas pour l'état qualitatif. Quant au volume quantitatif de l'extrait obtenu au début des étapes de production de graines (5,72 g) au site n° 4 et (6,06 g) au site n° 5 avec une moyenne de (7,21 g) est évident ; tandis qu'en ce qui concerne le volume quantitatif de l'extrait obtenu à la fin des étapes de production de semences sur les sites n° 4 et n° 5, les moyennes sont (6,88 g) et (7,21 g), respectivement. On pourrait affirmer que les sites mentionnés sont supérieurs en termes de volume d'extrait. Quant au volume quantitatif le plus faible, les sites sont à la fois en début et en fin de production de semences. Le volume quantitatif le plus faible est enregistré sur les sites n°7 avec une moyenne de (2,86 g) et n°11 (2,92 g) au début de l'étape de production des semences. Pendant ce temps, la quantité quantitative la plus faible de l'extrait produit par les graines de G. tournefortii L. a été signalée par les sites n ° 6, avec une moyenne (de 3,84) et n ° 11 (3,86) à la fin de l'étape de production de graines. Parmi les sites d'étude, les sites n° 7 et n° 11 au début de l'étape de production de graines et les sites n° 6 et n° 11 à la fin de l'étape de production de graines avaient le moins d'extrait produit de G. tournefortii L .graines (tableau 1).

Les résultats obtenus en comparant les moyennes entre les sites d'étude n'ont révélé aucune différence significative dans les sites n° 7, 11, 1 et 10 en termes d'extrait de rendement au début de l'étape de production de semences ; tandis que dans les sites restants n° : que les sept autres sites, à savoir 2, 3, 4, 5, 6, 8 et 9, présentaient une différence significative les uns par rapport aux autres. Les sites d'étude, 6 et 11, 2, 7 et 8, et 1, 3 et 9 ne sont pas significativement différents en termes de volume d'extrait à la fin de l'étape de production de semences. Les résultats indiquent que les sites 4, 5 et 10 présentaient une différence significative. Dans l'ensemble, la comparaison de la tendance des variations en termes de volume d'extrait de rendement dans ces processus révèle que les pourcentages trouvés à la fin de l'étape de production de semences sont plus élevés qu'à l'étape de début. La tendance à la hausse mentionnée est que ces pourcentages varient de (7,33 %) dans le site n° 10 à (27,71 %) dans le n° 9. On observe que seulement au site n° 6, le contenu extrait à la fin de l'étape de production de semences à (5,99 %) était inférieur à tous les autres sites (tableau 2).

Dans cette étude, les six composés d'acides gras suivants sont identifiés : acide myristique (C14 :0 ; acide tétradécanoïque), acide palmitique (C16 :0 ; acide hexadécanoïque), acide stéarique (C18 :0 ; acide octadécanoïque), acide oléique (C18 :0 ; :1 ; acide 9-octadécénoïque), acide linoléique (C18 :2 ; acide 9,12–octadécadiénoïque) et acide linolénique (C18 :3 ; acide 9,12,15–octadécatriénoïque). Ces composés d'acides gras identifiés sont comparés aux échantillons de référence disponibles. Toutes les expériences ont été réalisées pour les deux stades phénologiques de la production de graines de G. tournefortii L. dans les sites d'étude, séparément (Fig. 1 supplémentaire et Fig. 2 supplémentaire).

En général, les acides gras identifiés ne sont pas significativement différents dans leur sens qualitatif aux deux stades phénologiques, alors qu'au sens quantitatif, ils sont identifiés aux deux stades phénologiques. Ces composés sont différents les uns des autres, dans leurs caractéristiques et leur sens quantitatif. Parmi ces composés, les deux acides linoléiques comme composés d'acides gras les plus élevés et l'acide méristique comme les plus bas, sont identifiés et enregistrés aux deux stades phénologiques.

Le volume le plus élevé de ces acides gras est attribué à l'acide oléique, à l'acide palmitique et aux acides stéariques. Ces composés ont la même supériorité générale dans les deux stades phénologiques de la production de graines de G. tournefortii L. Les deux composés restants dans les teneurs en acides gras, l'acide linoléique et l'acide myristique, sont enregistrés comme ayant la teneur la plus faible aux deux stades phénologiques. Le volume quantitatif obtenu à partir de ces deux est différent l'un de l'autre dans les deux stades phénologiques. Les différences dans les valeurs quantitatives des profils d'acides gras identifiés sont généralement attribuées à deux facteurs principaux, les caractéristiques génétiques de la plante et le facteur principal des propriétés écologiques dans les sites d'étude.

Les métabolites secondaires, les constituants et les sous-produits des plantes médicinales sont produits à l'origine sous le contrôle de processus génétiques influencés par des facteurs environnementaux. Parce que leur contribution aux plantes n'est pas claire; on pense que les métabolites secondaires sont principalement produits pour réguler l'adaptation de la plante aux facteurs défavorables et aux tensions environnementales18. Les facteurs environnementaux provoquent des changements dans la procédure de synthèse et de production des différents constituants des plantes médicinales, tant sur le plan quantitatif que qualitatif18. La culture de plantes médicinales est considérée comme rentable lorsque la production de métabolites primaires et secondaires rapportée dans la plante est optimale17.

Certaines des caractéristiques les plus essentielles de ces acides gras sont : les acides gras saturés (SFA), les acides gras insaturés (UFA), les acides gras insaturés mono-liés (MUFA) et les groupes d'acides gras insaturés poly-liés (PUFA), le linoléique le rapport acides gras insaturés sur acides gras saturés (UFA/SFAs), le rapport acides gras polyinsaturés sur acides gras saturés (PUFAs/SFAs), le rapport acides gras monoinsaturés sur Le rapport acides gras polyinsaturés (AGMI/AGPI) et l'indice de Cox "Eq. (1)" aux deux stades phénologiques de production de graines de G. tournefortii L. sont étudiés et analysés dans tous les sites. L'indice de cox est calculé en pourcentage d'acides gras insaturés à 18 carbones19.

Dans l'équation ci-dessus, C18:1, C18:2 et C18:3 sont respectivement les acides gras oléique, linoléique et linolénique.

Les résultats de la comparaison moyenne entre les sites d'étude, ainsi que leurs détails pertinents sont présentés dans le tableau 3 (le début de l'étape de production de semences) et le tableau 4 (la fin de l'étape de production de semences). En ce qui concerne les résultats concernant le stade initial, les types d'acides gras identifiés suivants sont présentés dans le tableau 3 : l'acide myristique, l'acide palmitique et l'acide stéarique ont été identifiés comme les trois acides gras saturés. Les volumes les plus élevés et les plus faibles d'acide myristique sont rapportés dans les sites d'étude n° 9 (0,57 %) et n° 1 (0,001 %). La teneur la plus élevée en acide palmitique est signalée dans les sites n° 9 (14,48 %), n° 11 (11,90 %) et n° 4 (10,80 %), respectivement. La teneur la plus faible des composés mentionnés est enregistrée dans le site n ° 1 à (9,76%). Le volume le plus élevé d'acide stéarique est observé au site n° 11 à (3,69 %), et le plus faible est rapporté au site n° 9 à (1,88 %). Les volumes les plus élevés de SFA sont signalés par le site n° 9 à (16,94 %), le site n° 11 à (15,63 %) et le site n° 4 à (13,96 %). La plus faible teneur en AGS est attribuée au site n°1 à (12,66%). Le volume le plus élevé d'AGMI est enregistré pour les sites n° 11 à (40,2 %), n° 4 à (38,28 %) et n° 3 à (38,09 %). Le volume le plus faible est observé sur le site n°9 à (31,7%). En ce qui concerne les AGPI, le volume le plus élevé est attribué à l'acide linoléique et le plus faible à l'acide linolénique, les sites n° 6 à (51,51 %), n° 1 à (51,16 %) et n° 5 à (51,07 %) contiennent le plus haut volumes d'acide linoléique. Le volume le plus faible est enregistré pour le site n°4 à (47,6%). Le volume le plus élevé d'acide linolénique est obtenu à partir du site n° 9 à (2,53 %). Le volume le plus faible est obtenu sur les sites n°5 et 8 tous les deux à (0,09%). Il est révélé que le volume le plus élevé d'AGPI est attribué au site n° 1 à (52,28 %), au site n° 6 à (51,60 %) et au site n° 9 à (51,32 %). Le volume le plus faible est attribué au site n°11 à (44,25%). Les résultats des UFA révèlent que le volume le plus élevé des composés mentionnés est attribué aux sites n°1 à (87,32%), n°6 à (87,29%) , n° 10 à (87,04 %) et n° 5 à (87,02 %). C'est alors que la quantité la plus faible des composés mentionnés a été signalée sur le site n ° 9 (83,05%). Le rapport acide linoléique sur acide linolénique (n-6/n-3) dans tous les sites est significativement différent les uns des les volumes les plus élevés sont attribués au site n° 8 à (722,87) et les plus faibles au site n° 9 à (19,45). Le rapport UFA/SFA révèle que les volumes les plus élevés sont attribués au site n° 1 à (6,89) et au site n° 6 à (6,88). Le volume le plus faible est attribué au site n° 9 à (4,9). Le rapport PUFA/SFA indique que le site n° 1 à (4,12) et le site n° 6 à (4,07) sont les plus élevés. Le ratio le plus faible est attribué au site n° 11 à (2,83). Le rapport MUFA sur PUFA indique que le volume le plus élevé est celui du site n° 11 à (0,9) et le plus faible celui du site n° 9 à (0,61). Les résultats de l'indice de valeur de Cox indiquent que le site n° 9 à (5,85) a le volume le plus élevé parmi tous les sites. Le volume le plus bas de l'indice mentionné est attribué au site n° 11 à (5,01). L'indice de valeur de Cox des autres sites oscille entre les volumes les plus faibles et les plus élevés au début de l'étape de production des semences.

En ce qui concerne les résultats concernant le stade initial, les types d'acides gras identifiés suivants sont présentés dans le tableau 4 : l'acide myristique, l'acide palmitique et l'acide stéarique ont été identifiés comme les trois acides gras saturés. Les volumes les plus élevés et les plus faibles d'acide myristique sont rapportés dans les sites d'étude n° 2 à (0,10 %) et n° 1 à (0,002 %). La teneur la plus élevée en acide palmitique est signalée dans les sites n° 8 à (13,50 %) et n° 9 (à 12,61 %). La teneur la plus faible des composés mentionnés est enregistrée dans le site n ° 7 à (9,37%). Le volume le plus élevé d'acide stéarique est observé dans les sites n° 8 à (3,79 %), n° 4 à (3,75 %) et n° 9 à (3,61 %). Le plus bas est signalé par le site n° 1 à (2,58 %). Les volumes les plus élevés de SFA sont signalés par le site n° 8 à (17,45 %), le site n° 9 à (16,23 %) et le site n° 4 à (15,80 %). La plus faible teneur en AGS est attribuée au site n° 7 à (12,15 %). Le volume le plus élevé d'AGMI est enregistré pour les sites n° 9 à (41,19 %), n° 8 à (40,90 %) et n° 6 à (39,32 %). Le volume le plus faible est observé sur le site n°4 à (30,75%). Quant aux AGPI, le volume le plus élevé est attribué à l'acide linoléique et le plus faible à l'acide linolénique. Les sites n° 4 à (53,22 %), n° 7 à (51,63 %) et n° 5 à (51,23 %) contiennent les volumes les plus élevés d'acide linoléique. Le volume le plus faible est enregistré pour le site n°8 à (41,33%). Le volume le plus élevé d'acide linolénique est obtenu à partir des sites n° 9 à (0,48 %) et n° 3 à (0,39 %). Le volume le plus faible est obtenu sur les sites n°10 à (0,05%) et n°11 à (0,06%). Il est révélé que le volume le plus élevé d'AGPI est attribué au site n° 4 à (53,47 %). Le volume le plus faible est attribué au site n°8 à (41,61%). Les résultats des UFA révèlent que le volume le plus élevé des composés mentionnés est attribué au site n° 7 à (87,83 %) et que la quantité la plus faible des composés mentionnés a été rapportée au site n° 8 à (82,53 %). Le rapport acide linoléique sur acide linolénique (n-6/n-3) dans tous les sites est significativement différent les uns des autres car les volumes les plus élevés sont attribués au site n° 11 à (720) et les plus faibles au site n° 9 à ( 93.51). Le ratio UFA sur SFA révèle que les volumes les plus élevés sont attribués au site n°7 à (7,22). Le volume le plus faible est attribué au site n°9 à (5,15). Le rapport PUFA sur SFA indique que le site n° 7 à (4,25) et le plus bas est attribué au site n° 8 à (2,38). Le rapport MUFA sur PUFA indique que le volume le plus élevé est celui des sites n° 8 et 9 à la fois à (0,98) et le plus faible est celui du site n° 4 à (0,57). Les résultats de l'indice de valeur de Cox indiquent que les sites n° 4 à (5,86) et n° 7 à (5,83) ont le volume le plus élevé parmi tous les sites. Le volume le plus bas de l'indice mentionné est attribué au site n° 8 à (4,73). L'indice de valeur de Cox des autres sites oscille entre les volumes les plus faibles et les plus élevés au début de l'étape de production de semences. En genre, les résultats obtenus à partir des tableaux 3 et 4 ont montré que les volumes d'acides gras insaturés des graines de G. tournefortii L. sont bien supérieurs à ceux de ses acides gras saturés. (Fig. 1 et 2).

Diagramme à barres des quantités quantitatives de SFA, MUFA, PUFA et UFA au début de l'étape de production de graines de G. tournefortii L. dans les sites d'étude.

Diagramme à barres des quantités quantitatives de SFA, MUFA, PUFA et UFA à la fin de l'étape de production de graines de G. tournefortii L. dans les sites d'étude.

Cette analyse est effectuée pour évaluer le volume de rendement en extrait et le volume quantitatif des acides gras identifiés et leurs caractéristiques dans les principaux habitats de G. tournefortii L. aux deux stades phénologiques de la production de graines (c'est-à-dire le début de la production de graines et la fin)20. L'application de ces techniques permet d'identifier les composés d'acides gras de la plante mentionnée et leurs caractéristiques dans les sites d'étude. L'analyse par grappes est exécutée pour évaluer la similarité entre les sites d'étude et leur classification. Ces deux procédures sont adoptées pour déterminer le volume de composés extraits des graines de G. tournefortii L. ; concernant les facteurs environnementaux les plus importants dans les deux stades phénologiques. Le volume quantitatif des acides gras identifiés des graines de G. tournefortii L. et leurs caractéristiques sont classés dans les deux stades phénologiques de la production de graines. Dans cette étude, le processus de regroupement hiérarchique agglomératif est exécuté sur la base de l'indice de similarité de Gower via la méthode de liaison unique introduite par 21 et 2221,22. La matrice de corrélation et ses valeurs entre certaines variables écologiques importantes et le volume d'extrait de graines de G. tournefortii L. produit sont analysés au cours des deux étapes phénologiques de la production de graines (Fig. 3 supplémentaire et Fig. 4 supplémentaire). Les matrices et leurs valeurs et caractéristiques sont également évaluées avec les acides gras identifiés dans les sites d'étude (Fig. 5 supplémentaire et Fig. 6 supplémentaire).

PCA et analyse groupée du volume produit d'extrait ainsi que des principaux facteurs environnementaux au début de l'étape de production de semences.

À cette étape, le volume d'extrait produit par les graines de G. tournefortii L. ainsi que certains des principaux facteurs écologiques environnementaux ainsi que la physiographie, le climat et le sol au début de l'étape de production des graines sont évalués en appliquant la méthode PCA et le cluster analyse. Les noms de certains des facteurs environnementaux les plus importants et leur contenu quantitatif calculé sur les stades de croissance reproductive de G. tournefortii L. dans les sites d'étude sont tabulés dans le tableau 9. Comme observé dans (Fig. 3) le PC1 tracé sur l'horizontale l'axe représente la proportion la plus élevée de la variance à (51,1 %), tandis que le PC2 tracé sur l'axe vertical représente (22,8 %). Les résultats indiquent que le volume d'extrait des graines de G. tournefortii L. est directement et positivement corrélé au pH du sol et à la température annuelle moyenne. Les autres facteurs environnementaux sont corrélés au volume de l'extrait produit sont corrélés les uns aux autres. Les résultats de la variance des valeurs propres, le pourcentage de variance et le pourcentage de variance cumulée sont présentés dans le tableau 5.

Analyse en composantes principales (ACP) de la quantité d'extrait produite à partir de graines de G. tournefortii L. couplée à certains facteurs environnementaux au début de l'étape de production de graines (quatre graphiques ci-dessus) et analyse de grappes basée sur un processus de regroupement agglomératif hiérarchique utilisant une méthode de liaison unique à le stade de début de production de semences dans les sites d'étude (deux sous les dendrogrammes).

Les résultats de l'analyse typologique indiquent que les sites d'étude sont regroupés en quatre grands groupes, comme suit : les sites n° 1, 4 et 5 constituent le premier groupe ; les sites n° 2, 3, 6, 10 et 7 constituent le deuxième groupe ; les sites n°9 et constituent le troisième groupe. Le site n° 8 constitue le quatrième groupe. Le coefficient d'agglomération est de 0,34 (Fig. 3) PCA et analyse groupée du volume d'extrait produit avec les principaux facteurs environnementaux à la fin de l'étape de production des semences.

Les volumes d'extrait de graines de G. tournefortii L. et certains des facteurs environnementaux à la fin de l'étape de production des graines sont évalués en appliquant la méthode PCA et l'analyse par grappes dans cette étude. Comme observé dans (Fig. 4), le PC1 tracé sur l'axe horizontal représente la proportion la plus élevée de la variance à (51,1 %), tandis que le PC2 tracé sur l'axe vertical représente (24,1 %). Les résultats indiquent une légère différence entre les facteurs de température annuelle et de pH du sol. Une légère différence est positivement et directement corrélée au volume de rendement soumis à la position géométrique des autres facteurs environnementaux concernant les deux dimensions de l'ACP. Les autres facteurs environnementaux ne sont pas directement corrélés au volume d'extrait de graines de G. tournefortii L., bien qu'ils soient corrélés entre eux. Les résultats de la variance des valeurs propres, du pourcentage de variance et du pourcentage de variance cumulée sont présentés dans le tableau 6.

Analyse en composantes principales (ACP) de la quantité d'extrait produit à partir de graines de G. tournefortii L. couplée à certains facteurs environnementaux à la fin de l'étape de production de graines (quatre graphiques ci-dessus) et analyse de grappes basée sur un processus de regroupement agglomératif hiérarchique utilisant une méthode de liaison unique à la phase de fin de production de semences dans les sites d'étude (deux sous dendrogrammes).

Les résultats de l'analyse typologique indiquent que les sites d'étude sont regroupés en quatre grands groupes, comme suit : les sites n° 1, 2, 6, 10, 7, 4 et 5 constituent le premier groupe ; le site n°3 constitue le deuxième groupe ; les sites n°9 et 11 constituent le troisième groupe. Le site n° 8 constitue le quatrième groupe. Le coefficient d'agglomération est (0,38), (Fig. 4).

PCA et analyse groupée des composés d'acides gras identifiés des graines de G. tournefortii L. et de leurs caractéristiques au début de l'étape de production des graines.

Les composés d'acides gras identifiés de la graine de G. tournefortii L. et leurs caractéristiques pertinentes au début de la production de la graine sont évalués en appliquant la méthode PCA et l'analyse par grappes. Le PC1 tracé sur l'axe horizontal représente la proportion la plus élevée de la variance à (53 %), tandis que le PC2 tracé sur l'axe vertical est à (41,9 %) de la variation totale. Les six composés d'acides gras identifiés sont corrélés et affichés en deux dimensions PCA. L'acide myristique est positivement corrélé avec les acides gras palmitique et linolénique, avec une corrélation négative avec les acides gras oléique et stéarique. Il n'existe pas de corrélation significative entre l'acide myristique et l'acide linoléique. L'acide palmitique est positivement corrélé à l'acide linolénique ; alors qu'il n'existe pas de forte corrélation entre l'acide palmitique et les trois autres acides gras. Une corrélation significative et forte est observée entre l'acide stéarique et l'acide oléique, cependant, une corrélation modérée est observée entre les acides stéarique, linoléique et linolénique. Une corrélation relativement forte est observée entre les acides gras oléiques et linoléniques, cependant, comme mentionné ci-dessus, les acides gras identifiés, seuls ou en combinaison, ont des degrés de corrélation différents. Les caractéristiques des acides gras identifiés selon l'ACP révèlent que la plus faible contribution des variables étudiées est attribuée au rapport acide linoléique sur acide linolénique. Les autres variables indiquent une contribution plus élevée dans les dimensions de l'ACP. Par conséquent, la corrélation la plus élevée parmi les acides gras saturés est attribuée à l'acide palmitique. La corrélation la plus élevée parmi les MUFA est attribuée à l'acide oléique. La corrélation la plus élevée parmi les PUFA est attribuée à l'acide linoléique. La corrélation entre AGS et UFA est observée dans leur sens négatif et inverse. Le rapport UFAs/SFAs indique une corrélation négative et inverse avec les SFAs, alors qu'il en est de même pour les UFAs. Ce rapport est corrélé négativement et inversement avec l'acide palmitique. Le rapport PUFAs/SFAs indique qu'il existe une corrélation négative et directe avec les SFAs. Au contraire, les ratios UFAs/SFAs sont positivement et directement corrélés. Le résultat du rapport MUFAs sur PUFAs indique une corrélation positive et directe avec la quantité de MUFAs et une corrélation négative et inverse avec le volume de PUFAs. De plus, une corrélation positive et directe est observée entre ce rapport et les acides gras composés des acides gras oléique et stéarique. La variance de la valeur propre, le pourcentage de variance et le pourcentage de variance cumulée sont présentés dans le tableau 7.

Les résultats de l'analyse typologique indiquent que les sites d'étude sont regroupés en quatre grands groupes, comme suit : les sites n° 1, 5, 7, 8 et 6 constituent le premier groupe ; les sites n° 2, 3, 4 et 10 constituent le deuxième groupe. Le site n° 11 constitue le troisième groupe. Le site n° 9 constitue le quatrième groupe. Le coefficient d'agglomération est de 0,75 (Fig. 5).

Analyse en composantes principales (ACP) des profils d'acides gras des graines de G. tournefortii L. et de leurs caractéristiques au début de l'étape de production des graines (quatre graphiques ci-dessus) et analyse par grappes basée sur un processus de regroupement agglomératif hiérarchique utilisant une méthode de liaison unique au début de stade de production de graines dans les sites d'étude (deux sous les dendrogrammes).

ACP et analyse par grappes des composés d'acides gras des graines de G. tournefortii L. et de leurs caractéristiques à la fin de l'étape de production des graines.

Les composés d'acides gras des graines de G. tournefortii L. et leurs caractéristiques pertinentes à la fin de l'étape de production des graines sont analysés par la méthode PCA et l'analyse par grappes. Le PC1 tracé sur l'axe horizontal représente la proportion la plus élevée de la variance à (67 %), tandis que le PC2 tracé sur l'axe vertical représente (18,3 %) la variation totale. La corrélation entre les composés d'acides gras est évaluée, suivie de la détermination de la corrélation entre leurs propriétés liées entre elles et avec les composés d'acides gras, les résultats suivants : L'acide myristique est négativement et modérément corrélé avec l'acide stéarique ; la corrélation entre l'acide palmitique et les trois autres composés d'acides gras stéarique, linoléique et linolénique, est rapportée positive et très forte, négative et forte et positive et modérée, respectivement. Dans ce processus, une corrélation significative et forte est observée entre les acides stéarique et palmitique. L'acide stéarique est négativement et modérément corrélé à l'acide linoléique. L'acide oléique est négativement et inversement corrélé à l'acide linoléique. Il existe une corrélation positive et directe entre les acides gras linoléique, palmitique et linolénique, tandis que l'acide linoléique est corrélé négativement avec l'acide oléique et les acides stéarique. L'acide linoléique est corrélé négativement avec l'acide palmitique, avec une corrélation négative avec l'acide oléique et une corrélation modérée avec l'acide linolénique. L'acide linolénique est positivement et modérément corrélé avec l'acide palmitique et négativement et inversement corrélé avec l'acide linoléique. Les acides gras composés myristiques et linoléniques ont une contribution plus faible dans les dimensions PCA par rapport aux autres composés. Les résultats obtenus à partir des caractéristiques des acides gras identifiés en appliquant la méthode PCA sont les suivants : la contribution la plus faible des caractéristiques appartient au rapport acide linoléique sur acide linolénique dans les dimensions PCA et la corrélation la plus élevée entre les AGS est attribuée aux acides palmitique et stéarique. acides. La corrélation la plus élevée parmi les acides gras monoinsaturés MUFA est attribuée à l'acide oléique. La corrélation la plus élevée parmi les AGPI est attribuée à l'acide linoléique. La corrélation entre AGS et UFA est négative et inverse. Dans ce contexte, les acides gras palmitique et stéarique sont corrélés négativement et inversement avec le rapport UFA sur SFA. Il existe une relation négative et inverse entre le ratio AGS et UFA. Ce rapport est négativement et inversement corrélé avec les AGS et il est positivement et inversement corrélé avec les deux autres caractéristiques des mêmes acides gras. Ce rapport est négativement et inversement corrélé aux acides gras palmitique et stéarique. Ce rapport est positivement et directement corrélé à l'acide linoléique. Le rapport MUFAs/PUFAs indique une corrélation positive et directe avec le volume des MUFAs et est négativement et inversement corrélé avec les PUFAs. Ce rapport est positivement et directement corrélé avec l'acide oléique et négativement et inversement corrélé avec l'acide linoléique. La variance de la valeur propre, le pourcentage de variance en pourcentage et le pourcentage de variance cumulée sont présentés dans le tableau 8.

Les résultats de l'analyse typologique indiquent que les sites d'étude sont regroupés en quatre grands groupes, comme suit : les sites n° 1, 3, 7, 10 et 11 constituent le premier groupe ; les sites n° 2, 5 et 6 constituent le deuxième groupe ; les sites n°8 et 9 constituent le troisième groupe. Le site n° 4 constitue le quatrième groupe. Le coefficient d'agglomération est de 0,62 (Fig. 6).

Analyse en composantes principales (ACP) des profils d'acides gras des graines de G. tournefortii L. et de leurs caractéristiques à la fin de l'étape de production de graines (quatre graphiques ci-dessus) et analyse par grappes basée sur un processus de regroupement agglomératif hiérarchique utilisant une méthode de liaison unique à la fin de stade de production de graines dans les sites d'étude (deux sous les dendrogrammes).

Les graines de plantes, cultivées dans la nature sauvage, sont une source importante d'huile à usage nutritionnel, médicinal et industriel dans les zones naturelles. Comme différentes sources d'huile ont des compositions différentes, chercher à introduire de nouvelles sources d'huile pour la nutrition afin de générer de l'énergie et d'assurer la santé est nécessaire et inévitable. Tous les organes végétaux de G. tournefortii L. (racines, tiges, feuilles, fleurs et graines) sont consommés23. Les genres de Gundelia L. sont originaires des régions du Moyen-Orient et de la Méditerranée, parmi lesquels G. tournefortii L. est bien connu et spécifié comme source de nourriture précieuse24. Les éléments constitutifs de cette plante sont appliqués pour le traitement de différentes maladies comme la diarrhée et la bronchite, les maladies de la peau, la douleur, la diarrhée, les maladies respiratoires, les troubles digestifs, les laxatifs, les sédatifs, les accidents vasculaires cérébraux, les affections gastriques, l'hypoglycémie, le vitiligo, l'hypertension artérielle et le cancer25 ,26,27,28,29,30,31,32,33.

L'extrait d'huile de graines de G. tournefortii L. est signalé à la fin de l'étape de production des graines dans tous les sites d'étude. Le site n°6 fait exception car son rendement en extrait au début de l'étape de production de semences est supérieur à celui de l'étape. Les profils d'acides gras de G. tournefortii L. ne sont pas altérés qualitativement aux deux stades phénologiques de la production de graines, alors que des volumes différents sont enregistrés quantitativement dans les sites d'étude. Aux deux stades phénologiques de la production de graines, six composés d'acides gras sont identifiés chacun avec une gamme différente de volume dans tous les sites d'étude. Neuf caractéristiques spécifiques et identiques sont considérées et évaluées pour les deux stades phénologiques de la production de graines. Parmi ces caractéristiques, le volume le plus élevé des variations signalées aux deux stades phénologiques de la production de graines appartient au rapport acide linoléique sur acide linolénique, tandis que le volume le plus faible est attribué à l'indice de valeur de Cox parmi les sites d'étude. En général, le volume d'acides gras insaturés est enregistré supérieur à celui des AGS aux deux stades phénologiques de la production de graines. De plus, le volume d'AGS à la fin de l'étape de production des semences est supérieur à celui de l'étape de début. Le volume d'AGPI est supérieur à celui des AGMI dans les deux étapes de production de semences. La consommation quotidienne d'AGPI n-3 dans l'alimentation est importante car ils ont de nombreux effets bénéfiques sur les fonctions physiologiques du corps humain, comme la pression artérielle, la fréquence cardiaque, les triglycérides, l'inflammation, la fonction endothéliale et la diastolique cardiaque34. En général, les types de poissons gras sont, comme le thon, le saumon, le maquereau, le hareng et les sardines, les principales sources d'AGPI n-335. De même, il existe un volume substantiel d'acide linoléique (LA, n-6 PUFA) dans de nombreux types d'huiles végétales comme le tournesol, le soja, le maïs et les pépins de raisin35. L'acide linoléique est également présent dans certains produits transformés à partir de ces types d'huile, comme la margarine35. Des volumes considérables d'acide alpha-linolénique (ALA, n-3 PUFA) se trouvent dans de nombreuses sources végétales. Certaines sources d'huiles végétales bien connues et courantes comprennent le soja et le colza, les légumes, certaines noix et, surtout, les graines de lin et les types d'huile de lin35. L'Organisation mondiale de la santé s'est concentrée sur le ratio LA/ALA dans l'alimentation36 ; Par conséquent, le niveau d'apport minimal en AGE devrait être de (2,5 %) LA et (0,5 %) ALA pour prévenir les symptômes de carence et fournir l'énergie nécessaire aux adultes37.

Il n'existe qu'un seul article en farsi, où certains facteurs écologiques affectant le stade de croissance végétative de G. tournefortii L., et les composés d'acides gras extraits sont évalués39. Matthaus et Ozcan (2011) il existe sept composés d'acides gras dans l'huile extraite de G. tournefortii L. où les acides gras linoléiques et oléiques produisent (57,8 %) et (28,5 %) comme sources potentielles de nutriments, respectivement 33. Les conclusions de cette étude correspond à celle de 33. Abdul et al. (2012) ont mené une étude sur la teneur en acides gras de l'huile de Gundelia L. où huit acides gras dans les graines de G. tournefortii L. avec une teneur élevée en acide oléique et en acide linoléique à (40,13 %) et (20,33 %), respectivement40. Parce que l'acide oléique est identifié comme le premier composé dans leur étude, il ne correspond pas aux résultats de cette étude. Différents volumes quantitatifs sont rapportés sur d'autres composés identifiés dans l'étude, qui ne correspondent pas à cette étude. Khanzadeh et al. (2014) ont mené une étude sur les propriétés physicochimiques de l'huile de graines de G. tournefortii L. et ont identifié 11 acides gras. Trois de ces types d'acides gras sont l'acide linoléique, l'acide oléique et l'acide palmitique avec des volumes de (54,59 %), (29,59 %) et (9,88 %) composés prédominants, respectivement41. Les composés identifiés dans leur étude sont cohérents avec ceux à différents volumes. Zarei et al. (2013) ont évalué certaines des caractéristiques écologiques et le contenu en graines de G. tournefortii L., où le G. tournefortii L. avait un potentiel de croissance approprié avec certains des facteurs écologiques comme les précipitations annuelles moyennes (241,8 mm), la température annuelle moyenne (18 °C), pH du sol (8,18) et CE du sol (1,3 ds/m) dans la zone mentionnée. Ils ont confirmé que les graines de G. tournefortii L. contiennent 10 acides gras. Parmi ces 10, trois composés d'acide linoléique (45,46%), d'acide oléique (38,5%) et d'acide palmitique (10,42%) sont remarquables39. Leurs résultats dans les sections sur les caractéristiques écologiques et les acides gras sont cohérents avec les résultats de cette étude. Al-Saadi et al. (2017) ont évalué la variation de la teneur et de la composition en esters méthyliques d'acides gras et ont trouvé trois composés d'acides gras dans les graines oléagineuses de G. tournefortii L., où les volumes les plus élevés sont enregistrés comme l'acide linoléique (43,98 %), l'acide oléique (28,29 %) et acide palmitique (13,42%), respectivement42. Leurs résultats obtenus correspondent aux résultats de cette étude.

D'un point de vue général, l'analyse typologique est menée sur l'écologie quantitative des plantes et dans un large éventail d'autres domaines scientifiques. Cette analyse est exécutée pour trouver un modèle et un ordre dans un ensemble de données où une série de groupes est trouvée avec le volume de la variance au sein des groupes étant à son minimum et entre les groupes à son maximum43. Les résultats de l'analyse par grappes dans différentes sections de résultats ont révélé que les sites d'étude basés sur l'existence de similitudes entre eux peuvent être classés en différentes grappes et séparés les uns des autres.

Quant à l'isolement et l'identification des métabolites secondaires des plantes médicinales, en raison de la présence de composés bioactifs bénéfiques contrôlés par des processus génétiques et influencés par des facteurs environnementaux, cette question a toujours été et est une préoccupation des chercheurs impliqués. Il est suggéré d'évaluer conjointement le rôle des propriétés physiques et des caractéristiques morphologiques des graines de G. tournefortii L., ainsi que des études complémentaires pertinentes sur sa diversité génétique. De plus, la prise en compte des deux facteurs agronomiques de G. tournefortii L., à savoir l'amélioration de la race et l'amélioration des cultures à l'échelle des terres agricoles, ainsi que l'évaluation des caractéristiques écologiques de ses cultivars sauvages donneront des résultats plus réalistes.

Les échantillons de référence d'acides gras sont l'acide myristique (C14:0; acide tétradécanoïque), l'acide palmitique (C16:0; acide hexadécanoïque), l'acide stéarique (C18:0; acide octadécanoïque), l'acide oléique (C18:1; acide 9-octadécénoïque acide), acide linoléique (C18: 2; acide 9,12-octadécadiénoïque) et acide linolénique (C18: 3; acide 9,12,15-octadécatriénoïque), achetés chez Sigma-Aldrich (St. Louis MO). L'éther de pétrole (40–60C) a été acheté auprès de la société chimique Merck, Allemagne (pureté> 98%) pour l'extraction de l'huile de graines. Le méthylate de sodium (CH3ONa) est acheté auprès de Merck Company (Schuchardt Allemagne). Le méthanol extra pur (CH3OH, pureté ≥ 99,9 %) et le n-hexane (C6H14) de qualité analytique sont achetés auprès de la société chimique Merck (Darmstadt, Allemagne). Le sulfate de sodium (Na2So4) est acheté chez Aldrich (Munich Allemagne). De la graisse de silicone (Loxeal Cesano M. Italie) est achetée pour l'expérience.

La région centrale du Zagros en Iran couvre environ trois millions cent mille hectares, considérée comme un pôle de recherche et économique important en termes de culture, de production et de transformation des plantes médicinales. L'existence de facteurs tels qu'une riche biodiversité, des conditions climatiques spécifiques, des zones montagneuses diverses, de nombreux bassins versants et rivières, et des champs couverts de forêts et de parcours sont les principales caractéristiques de cette région. En général, 11 habitats majeurs de la plante G. tournefortii L. sont sélectionnés comme différents sites étudiés (Fig. 7). Certaines des caractéristiques écologiques influentes sur la croissance reproductive de la plante mentionnée sont évaluées et déterminées. (Tableau 9).

Localisation géographique des zones d'étude dans la région centrale du Zagros en Iran (les points marqués sur la carte indiquent les sites d'étude).

G. tournefortii L. est une plante indigène épineuse vivace largement cultivée dans la région centrale de Zagros en Iran entre mars et avril. G. tournefortii L. a de grandes racines verticales et des tiges semi-graminées et ramifiées, se fendant en une fleur. Ses feuilles embrassent et entourent la tige, sans pétioles, se terminant par des coupes profondes et des bords déchiquetés. Les graines de la plante sont légères et allongées avec des parapluies poilus, avec une capacité de viabilité très élevée14. En général, les écosystèmes des parcours font partie des bassins versants gérés par le ministère du Jahad agricole d'Iran. Pour mener à bien cette étude, la coordination nécessaire est faite avec les autorités pour collecter la plante mentionnée, sous réserve de l'autorisation de l'Organisation de gestion des ressources naturelles et des bassins versants d'Iran, une filiale du ministère de l'Agriculture Jahad d'Iran par lettre numéro 121/99/6778. en date du 31 mai 2020. L'identité taxonomique de la plante mentionnée est confirmée en comparant le spécimen de référence collecté avec celui de l'identité connue disponible dans l'herbier du Département des ressources naturelles, Université de technologie d'Ispahan, Iran. Les spécimens collectés de la plante G. tournefortii L. sont appariés avec leur numéro de spécimens de bon HIUT6171 dans l'herbier du Département des ressources naturelles par Mme Mahnaz Bayat, l'expert botaniste officiel de l'herbier du Département des ressources naturelles de l'Université d'Ispahan Technologie, Iran (son adresse e-mail est [email protected]).

Tout d'abord, l'étude phénologique du stade reproducteur des graines de G. tournefortii L. est évaluée et analysée au cours des deux périodes différentes, le début de la production de graines et la fin de la production de graines (Fig. 8). Le processus d'échantillonnage est exécuté sur la base d'une conception entièrement aléatoire en appliquant la méthode du quadrat de transect dans tous les sites d'étude au début et à la fin des étapes de production de semences (tableau 10). Ensuite, la taille de l'échantillon est déterminée dans chaque site d'étude selon 1515, où, les boutons floraux de G. tournefortii L. sont coupés dans des unités d'échantillonnage et placés dans des sacs d'échantillonnage spécifiques puis, les échantillons sont transférés au laboratoire botanique de la Département des ressources naturelles de l'Université de technologie d'Ispahan, Iran. Les graines collectées sont séchées dans une situation standard sans lumière, infection et humidité dans les 21 jours et les échantillons incomplets et immatures sont initialement séparés. Les graines séchées sont broyées en petits morceaux dans un moulin électrique (modèle PX-MFC90D). Les échantillons sont séparés et emballés à partir de deux stades phénologiques de la production de semences.

Partie (a) : Gundelia tournefortii L. ; Partie (b) : L'inflorescence de la capitale de G. tournefortii L. ; Partie (c) : Échantillons de graines de G. tournefortii L. au début du stade de production des graines ; Partie (d) : Échantillons de graines de G. tournefortii L. à la fin de l'étape de production des graines.

100 g des échantillons moulus de graines de G. tournefortii L. sont consommés pour l'extraction de l'huile des graines. Le solvant éther de pétrole (40–60 °C) est consommé pour l'extraction de l'huile de graines à travers l'appareil Soxhlet pendant 5 heures16. Ensuite, le mélange d'huile et de solvant est filtré à travers un papier filtre Whatman n° 1. Après cela, le solvant est éliminé par un évaporateur rotatif sous vide (modèle IKA HB 10) et l'huile de rendement est conservée au réfrigérateur à 4 ° C pour un examen plus approfondi. Cette expérience est menée séparément pour chaque stade phonologique.

Pour déterminer les profils d'acides gras de l'huile de graines de G. tournefortii L., d'abord, les échantillons sont initialement méthylés selon la méthode AOAC17, Ensuite, les échantillons méthylés (1μL) sont injectés dans le chromatographe en phase gazeuse (BEIFEN 3420A) équipé d'un détecteur à ionisation de flamme (FID), puis les esters méthyliques d'acides gras de chaque échantillon sont séparés sur WCOT en silice fondue HP-88 (100 m × 0,25 mm × 0,20 μm). L'azote est consommé comme gaz porteur avec un débit de 0,5 ml/min. Le programme de température de cette colonne est ajusté comme suit : premièrement, la colonne est maintenue à 175 °C pendant une minute, puis la température est augmentée à 240 °C pendant 2,5 minutes. Le temps total enregistré est de 29 min. La température d'injection est de 250 °C avec un rapport de division de 1:30.

L'analyse est effectuée pour tous les principaux habitats, y compris les profils quantitatifs et qualitatifs de rendement en volume d'extrait et d'acides gras pour chaque échantillon au cours des deux étapes phénologiques. Dans ce contexte, les résultats sont rapportés sous forme de moyenne ± SD avec analyse répétée (n = 3) par le logiciel statistique SPSS version 21. Le logiciel statistique R version 4.0.4. est appliqué pour exécuter l'ACP et l'analyse de cluster. Tous les ("Reshape2"), ("ade4"), ("ggplot2"), ("factoextra"), ("lattice"), ("permute"), ("vegan"), ("cluster") et ("tidyverse") les packages appliqués dans le logiciel R Studio sont nommés (langage de programmation pour les calculs et les images visuelles obtenues par traitement informatique).

Pour des raisons de confidentialité et d'éthique, les données et le matériel de l'étude actuelle sont disponibles auprès de l'auteur correspondant sur demande raisonnable.

Les ensembles de données générés et analysés au cours de l'étude en cours sont disponibles auprès de l'auteur correspondant sur demande raisonnable.

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Les auteurs remercient le Département des ressources naturelles de l'Université de technologie d'Ispahan (IUT), en Iran, d'avoir fourni l'équipement et les installations nécessaires à la recherche.

Les auteurs n'ont reçu de soutien d'aucune organisation pour le travail soumis.

Département des ressources naturelles, Université de technologie d'Ispahan, Ispahan, 84156–83111, Iran

HR Karimzadeh, HR Farhang & M. Tarkesh Esfahani

Département d'horticulture, Collège d'agriculture, Université de technologie d'Ispahan, Ispahan, 84156–83111, Iran

M. Rahimmalek

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HR Karimzadeh1, *, HR Farhang1, M. Rahimmalek2, M. Tarkesh Esfahani1 1. HR Karimzadeh (superviseur, coordinateur de toutes les étapes de la recherche et auteur correspondant de la recherche). Bureau : Département des ressources naturelles Université de technologie d'Ispahan, Isfahan 84 156 83 111, Iran. Courriel : [email protected] ; Téléphone : + 9831- 33 913 558 ; Télécopie : + 9831–33 912 840 ; Site Internet : Hamid Reza Karimzadeh ; Domaines de recherche : science du sol, conservation du sol et de l'eau, évaluation de l'impact environnemental, aménagement du territoire et gestion de l'utilisation du territoire. 1. HR Farhang (a conçu et réalisé toutes les expériences et co-écrit le manuscrit). Hamid Reza Farhang est doctorant en ingénierie et sciences des parcours au Département des ressources naturelles de l'Université de technologie d'Ispahan, Isfahan 84 156 83 111, Iran. Courriel : [email protected] ; Téléphone : + 9831–37 774 871 ; Télécopie : + 9831–37 773 169 ; Domaines de recherche : Plantes médicinales (caractéristiques phytochimiques : métabolites secondaires et composés bioactifs chimiques), Biosynthèse et études associées à la Nanotechnologie impliquant (Synthèse verte et Biosynthèse des plantes mentionnées) ; Écologie végétale (étude sur l'autécologie et la synécologie/caractéristiques écologiques quantitatives des plantes des espèces des parcours); Phytosociologie et Biodiversité. 2. M. Rahimmalek (Conseiller de recherche, coordinateur de toutes les affaires d'expérimentations phytochimiques et co-auteur du manuscrit). Bureau : Département d'horticulture, Collège d'agriculture, Université de technologie d'Ispahan, Isfahan 84 156 83 111, Iran. Courriel : [email protected] ; Téléphone : + 9831–33 913 348 ; Télécopie : + 9831–33 912 254 ; Site Web : Dr Mehdi Rahimmalek ; Domaines de recherche : Plantes médicinales, Extraction et analyse de métabolites secondaires et Biotechnologie Sélection de plantes médicinales. 1. M. Tarkesh Esfahani (Conseiller de recherche, a conçu et analysé les données avec un logiciel statistique et co-écrit le manuscrit). Bureau : Département des ressources naturelles Université de technologie d'Ispahan, Isfahan 84 156 83 111, Iran. Courriel : [email protected] ; Téléphone : + 9831–33 911 025 ; Télécopie : + 9831–33 912 840 ; Site Internet : Mostafa Tarkesh Esfahani ; Domaines de recherche : Modélisation spatiale ; Modélisation de la distribution des espèces et inventaire des parcours. Il est nécessaire de préciser que l'ensemble des auteurs a lu et approuvé le manuscrit final.

Correspondance avec HR Karimzadeh.

Les auteurs ne déclarent aucun intérêt concurrent.

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Réimpressions et autorisations

Karimzadeh, HR, Farhang, HR, Rahimmalek, M. et al. Variations spatio-temporelles de l'extrait produit et des composés d'acides gras identifiés des graines de Gundelia tournefortii L. dans le centre de Zagros, Iran. Sci Rep 13, 7665 (2023). https://doi.org/10.1038/s41598-023-34538-5

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Reçu : 19 novembre 2022

Accepté : 03 mai 2023

Publié: 11 mai 2023

DOI : https://doi.org/10.1038/s41598-023-34538-5

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